Preview

Вестник трансплантологии и искусственных органов

Расширенный поиск

ОРБИТАЛЬНАЯ ЖИРОВАЯ КЛЕТЧАТКА – НОВЫЙ РЕСУРС ДЛЯ ТРАНСПЛАНТОЛОГИИ

https://doi.org/10.15825/1995-1191-2015-4-118-123

Полный текст:

Аннотация

Жировая ткань широко используется в трансплантологии как для восполнения дефицита объема, так и в качестве источника клеток для коррекции функциональных нарушений. Несмотря на более чем вековой опыт аутотрансплантации жировой клетчатки, до сих пор нет гарантии оптимального результата в отдаленном посттрансплантационном периоде. Это заставляет искать новые методики выполнения отдельных этапов пересадки, дополнительные факторы, предотвращающие лизис трансплантата, сопровождающийся фиброзом тканей, а также наиболее оптимальные источники жировой ткани. Анализ современных литературных данных позволяет рассматривать орбитальную жировую клетчатку как уникальную разновидность жировой ткани, скрывающую огромный потенциал для трансплантологии. 

Об авторах

С. А. Борзенок
ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России, Москва, Российская Федерация ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России, Москва, Российская Федерация
Россия


М. Б. Гущина
ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России, Москва, Российская Федерация
Россия


Д. С. Афанасьева
ФГБУ «МНТК «Микрохирургия глаза им. акад. С.Н. Федорова» Минздрава России, Москва, Российская Федерация
Россия


Г. А. Шилкин
ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России, Москва, Российская Федерация
Россия


Список литературы

1. Tran TT, Kahn CR. Transplantation of adipose tissue and stem cells: role in metabolism and disease. Nat Rev Endocrinol. 2010; 6:195–213. doi:10.1038/nrendo.2010.20.

2. Neueber GA. Fat transplantation. Chir Kongr Verhandl Dtsch Gesellsch Chir. 1893; 22: 66.

3. Сухопарова ЕП. Экспериментальное обоснование оптимизации технологии выполнения липофиллинга: экспериментальное исследование: Автореф. дис. ... канд. мед. наук. СПб., 2012: 24. Sukhoparova EP. Eksperimental'noe obosnovanie optimizatsii tekhnologii vypolneniya lipofillinga: eksperimental'noe issledovanie [Dissertation]. SPb., 2012: 24.

4. Luna ACL, Madeira MEP, Conceição TO, Moreira JALC, Laiso RAN, Maria DA. Characterization of adipose-derived stem cells of anatomical region from mice. BMC Research Notes. 2014; 7: 552.

5. Lopa S, Colombini A, Stanco D, de Girolamo L, Sansone V, Moretti M. Donor-matched mesenhymal stem cells from knee infrapatellar and subcutaneous adipose tissue of osteogenic commitment. European Cells and Materials. 2014; 27: 298–311.

6. Sbarati A, Accorsi D, Benati D, Marchetti L, Orsini G, Rigotti G et al. Subcutaneous adipose tissue classification. Europian Journal of Histochemistry. 2010; 54: e48. doi:10.4081/ejh.2010.e48.

7. Eslaminejad MB, Mardpour S, Ebrahimi M. Mesenchymal Stem Cells Derived from Rat Epicardial Versus Epididymal Adipose Tissue. Iranian Journal of Basic Medical Sciences. 2011; 14; 1: 25–34.

8. Шилкин ГА, Гемонов ВВ, Андрейцев АН, Иванова ЗГ, Калинников ЮЮ, Шилкин АГ. Эмбриогенез и функции ретробульбарной клетчатки и ее связь с клинической офтальмологией. Актуальные вопросы детской офтальмологии. М., 1990: 154–160. Shilkin GA, Gemonov VV, Andreytsev AN, Ivanova ZG, Kalinnikov YuYu, Shilkin AG. Embriogenez i funktsii retrobul'barnoy kletchatki i ee svyaz' s klinicheskoy oftal'mologiey. Aktual'nye voprosy detskoy oftal'mologii. M., 1990: 154–160.

9. Шилкин ГА, Чабров АЕ, Давыдов ДВ, Науменко НА, Иванова ЗГ, Андрейцев АН. Морфологические особенности ретробульбарной клетчатки у человека в раннем возрастном периоде. Актуальные вопросы детской офтальмологии. М., 1990: 161–165. Shilkin GA, Chabrov AE, Davydov DV, Naumenko NA, Ivanova ZG, Andreytsev AN. Morfologicheskie osobennosti retrobul'barnoy kletchatki u cheloveka v rannem vozrastnom periode. Aktual'nye voprosy detskoy oftal'mologii. M., 1990: 161–165.

10. Шилкин ГА, Михайлова ГД, Климов НИ, Харизов АА. Ультразвуковая характеристика ретробульбарной клетчатки. Лазерные методы лечения и ангиографические исследования в офтальмологии. М., 1983: 266–271. Shilkin GA, Mikhaylova GD, Klimov NI, Kharizov AA. Ul'trazvukovaya kharakteristika retrobul'barnoy kletchatki. Lazernye metody lecheniya i angiograficheskie issledovaniya v oftal'mologii. M., 1983: 266–271.

11. Вит В. Строение зрительной системы человека. Одесса: Астропринт, 2010: 587. Vit V. Stroenie zritel'noy sistemy cheloveka. Odessa: Astroprint, 2010:587

12. Ahmadi AJ, Saari JC, Mozaffarian D, Garwin GG, Tarbet KJ, Orcutt JC et al. Decreased carotenoid content in preaponeurotic orbital fat of patients with involutional ptosis. Ophthal Plast Reconstr Surg. 2005; 21 (1): 46–51.

13. Johnston MC, Noden DM, Hazelton RD et al. Origins of avian ocular and periocular tissues. Exp Eye Res. 1979; 29: 27–43.

14. Meier S. The distribution of cranial neural crest cells during ocular morphogenesis. Prog Clin Biol Res. 1982; 82: 1–15.

15. Bremond-Gignac D, Copin H. Anatomical histological and mesoscopic study of the adipose tissue of the orbit. Surg Radiol Anat. 2004; 26 (4): 297–302.

16. Gesta S, Tseng YH, Kahn CR. Developmental origin of fat: tracking obesity to its source. Cell. 2007; 131 (2): 242–256.

17. Wiersinga WM, Kahaly G. Graves' orbitopathy: a multidisciplinary approach: questions and answers. Basel: Karger Medical and Scientific Publishers, 2007.

18. Onyimba C, Bujalska I, Durrani O, Abbott J, Khosla P, Moosavi A et al. Glucocorticoid metabolic pathways in human orbital adipose tissue: a comparison with subcutaneous and omental depots. Endocrine Abstracts. 2007; 13: 115.

19. Ilankovan V, Soames JV. Morphometric analysis of orbital, buccal and subcutaneous fats: their potential in the treatment of enophthalmos. Br J Oral Maxillofac Surg. 1995; 33 (1): 40–42.

20. Sires BS, Lemke BN, Dortzbach RK, Gonnering RS. Characterization of human orbital fat and connective tissue. Ophthal Plast Reconstr Surg. 1998; 14 (6): 403–414.

21. Korn BS, Kikkawa DO, Hicok KC. Identification and Characterization of Adult Stem Cells from Human Orbital Adipose Tissue. Ophthal Plast Reconstr Surg. 2009; 25 (1): 27–32.

22. Chen SY, Mahabole M, Horesh E, Wester S, Goldberg JL, Tseng SC. Isolation and characterization of mesenchymal progenitor cells from human orbital adipose tissue. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2014; 55 (8): 4842–4852.

23. Ho IH, Ma WH, Tseng TC, Chen YF, Chen MH, Lee OK. Isolation and characterization of miltipotent stem cells from human orbital fat tissues. Tissue Eng Part A. 2011; (1–2): 255–266.

24. Kim NJ, Choung HK, Khwarg SI, Yu YS. Free orbital fat graft to prevent porous polyethylene orbital implant exposure in patients with retinoblastoma. Ophthal Plast Reconstr Surg. 2005; 21: 253–258.

25. Беляковский ПВ, Лобанок ЕС. Перспективы применения стволовых клеток в офтальмологии. Офтальмология в Беларуси. 2009; 2 (02): 81–91. Beljakovskij PV, Lobanok ES. Perspektivy primenenija stvolovyh kletok v oftal'mologii. Oftal'mologija v Belarusi. 2009; 2 (02): 81–91.

26. Dhamodaran K, Subramani M, Ponnalagu M, Shetty R, Das D. Ocular stem cells: a status update! Stem Cell Res Ther. 2014; 5 (2): 56. doi: 10.1186/scrt445.

27. Wester ST. Orbital Stem Cells. Curr Ophthalmol Rep. 2014; 2: 107–115.

28. Lin KJ, Loi MX, Lien GS, Cheng CF, Pao HY, Chang YCh et al. Topical administration of orbital fat-derived stem cells promotes corneal tissue regeneration. Stem Cell Res Ther. 2013; 4 (3): 72.

29. Hsiao CH, Ji AT, Chang CC, Cheng CJ, Lee LM, Ho JH. Local injection of mesenchymal stem cells protects testicular torsion-induced germ cell injury. Stem Cell Res Ther. 2015; 6: 113. doi: 10.1186/s13287-015-0079-0.

30. Chien MH, Bien MY, Ku CC, Chang YC, Pao HY, Yang YL et al. Systemic human orbital fat-derived stem/ stromal cell transplantation ameliorates acute inflammation in lipopolysaccharide-induced acute lung injury. Crit Care Med. 2012; 40 (4): 1245–1253. doi: 10.1097/ CCM.0b013e31823bc89a.

31. Park BS, Jang KA, Sung JH, Park JS, Kwon YH, Kim YH et al. Adipose-derived stem cells and their secretory factors as a promising therapy for skin aging. Dermatol Surg. 2008; 34 (10): 1323–1326. doi: 10.1111/j.15244725.2008.34283.x.

32. Mojallal A, Lequeux C, Shipkov C, Breton P, Foyatier JL, Braye F et al. Improvement of skin quality after fat grafting: clinical observation and an animal study. Plast Reconstr Surg. 2009; 124 (3): 765–774. doi: 10.1097/ PRS.0b013e3181b17b8f.


Для цитирования:


Борзенок С.А., Гущина М.Б., Афанасьева Д.С., Шилкин Г.А. ОРБИТАЛЬНАЯ ЖИРОВАЯ КЛЕТЧАТКА – НОВЫЙ РЕСУРС ДЛЯ ТРАНСПЛАНТОЛОГИИ. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2015;17(4):118-123. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2015-4-118-123

For citation:


Borzenok S.A., Gushchina M.B., Afanasyeva D.S., Shilkin G.A. ORBITAL ADIPOSE TISSUE IS A NEW RESOURCE FOR TRANSPLANTOLOGY. Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs. 2015;17(4):118-123. (In Russ.) https://doi.org/10.15825/1995-1191-2015-4-118-123

Просмотров: 486


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1995-1191 (Print)
ISSN 2412-6160 (Online)