ОСОБЕННОСТИ СУБПОПУЛЯЦИОННОГО СОСТАВА ЛИМФОЦИТОВ КРОВИ У РЕЦИПИЕНТОВ В ТЕЧЕНИЕ ПЕРВОГО МЕСЯЦА ПОСЛЕ ПЕРЕСАДКИ ПЕЧЕНИ
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2015-1-68-73
Аннотация
Соотношения субпопуляционного состава мононуклеарных клеток крови у 68 пациентов исследованы методом проточной цитометрии до и в течение первого месяца после трансплантации трупной печени с целью определения их возможного вклада в процессы приживления трансплантата. Полученные данные позволяют рассматривать изменения регуляторных Т-клеток после трансплантации как частный случай генерализованного смещения всего дифференцировочного процесса в лимфоцитопоэзе, начиная со стволовых гемопоэтических клеток и прелимфоцитов. Смещение сопровождается увеличением юных гематопоэтических стволовых клеток, клеток предшественников лимфоцитарного ряда, клеток с ангиогенными свойствами и уменьшением большинства более зрелых дифференцированных форм лимфоцитов. Ослабление «толерогенной» активности печени у больных в листе ожидания трансплантации печени и восстановление ее после трансплантации объяснено морфообразующим, трофическим механизмом. Основу этого механизма составляет увеличение в крови стволовых гемопоэтических клеток и ангиогенных клеток, переносящих регенераторную информацию к трансплантату.
Ключевые слова
Об авторах
А. Н. Шутко
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий Минздрава РФ, Санкт-Петербург, Российская Федерация
Россия
Россия
О. А. Герасимова
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий Минздрава РФ, Санкт-Петербург, Российская Федерация
Россия
Россия
Л. П. Екимова
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий Минздрава РФ, Санкт-Петербург, Российская Федерация
Россия
Россия
Ф. К. Жеребцов
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий Минздрава РФ, Санкт-Петербург, Российская Федерация
Россия
Россия
А. М. Гранов
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий Минздрава РФ, Санкт-Петербург, Российская Федерация
Россия
Россия
Список литературы
1. Fang Z, Hua Z, Changying L, Jianmin W, Chengjuan L, Kangli X et al. Level of CD4+CD25+CD127Treg Cells in Donor Graft is Associated with a Low Risk of a GVHD after allo-HSCT for Children with Hematologic Malignancies. J. Cell. Sci Ther. 2013; 4 (3): 1000148:1– 5. doi:10,4172/2157-7013.1000148
2. Lutsiak MEC, Semnani RT, De Pascalis R, Kashmiri SVS, Schlom J, Sabzevari H. Inhibition of CD4+25+ T regulatory cell function implicated in enhanced immune response by low-dose cyclophosphamide Inhibition of CD4+25+ T regulatory cell function implicated in enhanced immune response by low-dose cyclophosphamide. Blood. 2005; 105: 2862–2868. doi: 10.1182/ blood-2004-06-2410.
3. Zhou T-B, Yang G-S. Roles of vascular endothelial growth factor in acute rejection reaction following liver transplantation. Transplant. Immunology. 2011; 25: 207– 209. doi: 10.1016/j.trim.2011.08.001.
4. Bradley JA. Tolerance by Treg Therapy. Am. J. of Transplantation. 2014; 14: 5–6. doi:10.1111/ajt.12510.
5. Beres AJ, Drobyski WR. The role of regulatory T-cells in the biology of graft versus host disease. Front. Immunol. 2013; 4: 163. doi: 10.3389/fimmu.2013.00163.
6. Lerret NM, Luo X. IL-15-expanded СD8+ СD122+ cells: when do they suppress? American Journal of transplantation. 2014; 14:7–8. doi: 10.1111/ajt.12516.
7. Ye H, Chang Y, Zhao X, Huang X. Characterization of CD3+CD4−CD8−(double negative) T-cells reconstitution inpatients following hematopoietic stem-cell transplantation. Transplant Immunology. 2011; 25: 180–186. doi:10.1016/j.trim.2011.08.004.
8. Jackson AL, Matsumoto H, Janszen M, Maino V, Blidy A, Shye S. Restricted expression of p55 interleukin 2 receptor (CD25) on normal T cells. Clinical Immunology and Immunopathology. 1990; 54: 126–133. doi:10.1016/0090-1229(90)90012-F.
9. de Goër de Herve MG, Gonzales E, Hendel-Chavez H, Decline J-L, Mourier O, Abbed K et al. CD25 Appears Non Essential for Human Peripheral Treg Maintenance in vivo. PLoS ONE. 2010; 5 (7): e11784. doi:10.1371/ journal.pone.0011784.
10. Yu Y, Zitzner JR, Houlihan J, Herrera N, Xu L, Miller J et al. Common Gamma Chain Cytokines Promote Rapid in vitro Expansion of Allo-Specific Human CD8+ Suppressor T Cells. PLoS ONE. 2011; 6 (12): e28948. doi: 10.1371/journal.pone.0028948.
11. Rehg JE, Bush D, Ward JM. The Utility of Immunohistochemistry for the Identification of Hematopoietic and Lymphoid Cells in Normal Tissues and Interpretation of Proliferative and Inflammatory Lesions of Mice and Rats. Toxicol. Pathol. 2012; 40 (2): 345−374. doi: 10.1177/0192623311430695.
12. Shoutko A, Karamullin M, Ekimova L, Shoumski I, Phyedorov, Sosyukin I. et al. Latent time of generation of different lymphocytes subsets in blood of Chernobyl clean workers. University of Leicester, UK: Book of Abstracts of 34th Annual meeting of European Society for Radiation Biology. 5th–8th September 2005: 166–167.
13. Bertolino PG, Mc Caughan WD, Bowen G. Role of primary intrahepatic T-cell activation in the ‘liver tolerance effect’. Immunology and Cell Biology. 2002; 80: 4–92. http://www.nature.com/icb/journal/v80/n1/abs/icb200210a.html.
14. Ekka-Zochar A, Zitser-Gurevich Y, Mandel M, WeissSalz I, Nir S, Mor E et al. Graft survival and its determinants: a 3 year national experience with liver transplantation in Israel. IMAJ; 2006. 8:400–405. PMID: 16833169.
15. Damle NK, Engleman EG. Antigen-specific suppressor T-lymphocytes in man. Clin. Immunol. Immunopathol. 1989. 53: 17–24. PMID:2551552.
16. Kim S-W, Kim H, Cho H-J Lee JU, Levit R, Yoon YS. Human Peripheral Blood-Derived CD31-Cells Have Robust Angiogenic and Vasculogenic Properties and Are Effective for Treating Ischemic Vascular Disease. JACC (Journal of the American College of Cardiology). 2010; 56 (7): 593–607. doi: 10.1016/j.jacc.2010.01.070.
17. Schwartzenberg S, Mor A, Luboshits G, Planer D, Deutsch V, Keren G et al. Association between circulating early endothelial progenitors and CD4+CD25+regulatory T-cells: a possible cross-talk between immunity and angiogenesis? American Journal of Immunology. 2005; 1 (4): 143–147. ISSN 1553-619X.
18. Shutko AN, Gerasimova OA, Ekimova LP, Zherebtsov FK. Angiogenic Blood Cells After Liver Transplantation. Vestnik transplantologii i iskusstvennykh organov. 2012; 14 (4): 40–43. [in Russ]
19. Drapeau Ch. Cracking the stem cell code: demystifying the most dramatic scientific breakthrough of our times.: / 1st ed. Hillsboro, Or, USA: Sutton Hart Press, Goodwill Books; 2010.
20. Kucia M, Ratajczak J, Ratajczak MZ. Bone marrow as a source of circulating CXCR4+ tissuecommitted stem cells. Biol Cell. 2005; 97: 133–146. doi: 10.1042/ BC20040069.
21. Alison MR, Islam S, Lim S. Stem cells in liver regeneration, fibrosis and cancer: the good, the bad and the ugly. J Pathol. 2009. 217 (2): 282–298. doi:10.1002/path.2453.
22. Hopkins C, Li J, Rae F, Littie MH. Stem cells options for kidney disease. J. Pathol. 2009; 217 (2): 265–281. doi: 10.1002/path.2477.
23. Kolvenbach R, Kreissig C, Cagiannos C Afifi R, Schmaltz E. Intraoperative stem cells treatment in patients with critical limb ischemia using a novel point-ofcare device. Ann. Vasc. Surg. 2010; 24 (3): 367–372. doi: 10.1016/j.avsg.2009.07.018.
24. Wagers AJ, Weissman IL. Plasticity of adult stem cells. Cell. 2004; 116 (5): 639–648. PMID: 15006347.
25. Burchfield JS, Dimmeler S. Role of paracrine factors in stem and progenitor cell mediated cardiac repair and tissue fibrosis. Fibrogen Tissue Rep. 2008; 1 (4): 1–11. doi: 10.1186/1755-1536-1-4.
26. Camargo FD, Finegold M, Goodell MA. Haematopoietic myelomonocytic cells are the major source of hepatocyte fusion partners. J. Clin. Invest. 2004; 113 (9): 1266– 1270. doi: 10.1172/JCI200421301.
27. Wassmann S, Werner N, Czech T, Nickenig G. Improvement of endothelial function by systemic transfusion of vascular progenitor cells. Circ Res. 2006; 99 (8): e74–83. doi: 10.1161/01.RES.0000246095.90247.d4.
28. Strick-Marchand H, Masse GX, Weiss MC, Di Santo JP. Lymphocytes Support Oval Cell-Dependent Liver Regeneration. The Journal of Immunology. 2008; 181 (4): 2764–2771. doi:10.4049/jimmunol.181.4.2764.
29. Pilat N, Unger L, Berlakovich GA. Implication for Bone Marrow Derived Stem Cells in Hepatocyte Regeneration after Orthotopic Liver Transplantation. International Journal of Hepatology. 2013; Article ID 310612:1–7. doi.org/10.1155/2013/310612.
30. Lee S-G, Hwang Sh, LeeY-J, Park K-M, Jeon H-B, Min PCh. Regeneration of graft liver in adult-to-adult living donor liver transplantation using a left lobe graft. J. Korean Med. Sci. 1998; 13: 350–354. ISSN 10118934.
Рецензия
Для цитирования:
Шутко А.Н., Герасимова О.А., Екимова Л.П., Жеребцов Ф.К., Гранов А.М. ОСОБЕННОСТИ СУБПОПУЛЯЦИОННОГО СОСТАВА ЛИМФОЦИТОВ КРОВИ У РЕЦИПИЕНТОВ В ТЕЧЕНИЕ ПЕРВОГО МЕСЯЦА ПОСЛЕ ПЕРЕСАДКИ ПЕЧЕНИ. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2015;17(1):68-73. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2015-1-68-73
For citation:
Shoutko A.N., Gerasimova O.A., Ekimova L.P., Zherebtsov F.K., Granov A.M. FEATURES OF SUBPOPULATION COMPOSITION OF BLOOD LYMPHOCYTES IN RECIPIENTS WITHIN THE FIRST MONTH AFTER LIVER TRANSPLANTATION. Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs. 2015;17(1):68-73. (In Russ.) https://doi.org/10.15825/1995-1191-2015-1-68-73
Просмотров: 1101
Послать статью по эл. почте 