О ВОЗМОЖНОСТИ СОВЕРШЕНСТВОВАНИЯ КОНСЕРВАЦИИ ДОНОРСКИХ РОГОВИЦ ПУТЕМ ПРИМЕНЕНИЯ РЕГУЛЯТОРНЫХ ПЕПТИДОВ
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2011-4-101-105
Аннотация
В статье проанализированы традиционные и современные методы консервации трупных донорских ро- говиц, предназначенных для сквозной и задней послойной кератопластики. Обсуждается перспектива ослабления повреждающих эффектов гипотермии на ткани роговицы и повышения эффективности со- хранения монослоя эндотелиальных клеток путем включения биорегуляторных пептидов в составы кон- сервирующих сред. Подчеркивается важная роль использования пептидных препаратов – ревитализато- ров нового поколения – для сохранения витальных свойств эндотелиальных клеток.
Об авторах
С. А. Борзенок
ФГУ МНТК «Микрохирургия глаза им. акад. С.Н. Федорова» Росмедтехнологий, г. Москва
Россия
Россия
О. И. Ролик
ФГУ МНТК «Микрохирургия глаза им. акад. С.Н. Федорова» Росмедтехнологий, г. Москва
Россия
Россия
Н. А. Онищенко
ФГУ «ФНЦ трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова» Минздравсоцразвития РФ, г. Москва

Россия
Россия
Ю. А. Комах
ФГУ МНТК «Микрохирургия глаза им. акад. С.Н. Федорова» Росмедтехнологий, г. Москва
Россия
Россия
Список литературы
1. Борзенок С.А. Медико-технологические и методоло- гические основы эффективной деятельности Глаз- ных тканевых банков России в обеспечении опера- ций по сквозной трансплантации роговицы // Дис. ... д-ра мед. наук. М., 2008. С. 309.
2. Вит В.В. Строение зрительной системы человека. Одесса: АстроПринт, 2003. 655 с.
3. Гундорова Р.А., Бордюгова Г.Г., Травкин А.Г. Сохран- ность структур роговой оболочки при различных способах консервирования // Материалы межд. конф. по кератопластике и кератопротезированию. Одесса, 1978. С. 70–71.
4. Илатовская Л.В., Маслова-Хорошилова И.П., Дере- вянко В.П. Ультраструктура роговицы глаза челове- ка после криоконсервации // Межд. конф. по керато- пластике и кератопротезированию: Тез. докл. Одес- са, 1978. С. 74–75.
5. Каспаров А.А., Ермаков Н.В., Раппопорт Ю.М. Эн- дотелий трансплантата донора после сквозной кера- топластики // Вестн. офтальмол. 1990. Т. 106. No 5. С. 12–16.
6. Копаева В.Г. Современные аспекты сквозной субто- тальной кератопластики. Дис. ... д-ра мед. наук. М., 1982. 435 с.
7. Максимов И.Б. Применение препарата ретиналамин в офтальмологии: Пособие для врачей. СПб., 2005. 20 с.
8. Мороз З.И., Тахчиди Х.П., Калинников Ю.Ю. и др. Современные аспекты кератопластики // Федоров- ские чтения «Новые технологии в лечении заболева- ний роговицы». М., 2004. С. 280–288.
9. Онищенко Н.А., Кирпатовский В.И. Влияние низких температур на структурно-функциональную целост- ность изолированных органов // Очерки по физиоло- гическим проблемам трансплантологии и примене- нию искусственных органов / Под ред. В.И. Шумако- ва). Тула: Репроникс Лтд., 1998. 152. 179 c.
10. Попова З.С., Королев В.В. Ультраструктура роговой оболочки, консервированной криометодом // Вестн. офтальмологии. 1979. No 2. С. 32–36.
11. Ролик И.С. Фетальные органопрепараты: клиниче- ское применение. М., РегБиоМед, 2003. С. 736.
12. Ронкина Т.И. Закономерности возрастных измене- ний эндотелия роговицы человека в норме и патоло- гии, возможности активации пролиферации эндоте- лия и их назначение в офтальмологии: Дис. ... д-ра мед. наук в форме науч. доклада. М., 1994. 48 с.
13. Федоров С.Н., Ронкина Т.И., Явишева Т.М. Эндоте- лий роговицы человека. М.: МНТК «Микрохирургия глаза», 1993. 126 с.
14. Хавинсон В.Х., Трофимова С.В. Пептидные биорегу- ляторы в офтальмологии. СПб., 2003. 44 с.
15. Ченцова Е.В. Система патогенетически обоснован- ного лечения ожоговой травмы глаз: Дис. ... д-ра мед. наук. М., 1996. 304 с.
16. Шумаков В.И., Онищенко Н.А., Кирпатовский В.И. Фармакологическая защита трансплантата. М.: Ме- дицина, 1983. 232 с.
17. Юрченко Т.Н. Гипотермическая и низкотемператур- ная консервация роговицы и течение восстанови- тельного периода после трансплантации: Автореф. дис. ... д-ра мед. наук. Харьков, 1982. 37 с.
18. Явишева Т.М. Морфо-функциональные особенности эндотелия роговицы человека в норме и патологии и отбор донорского материала для кератопластики: Дис. ... канд. мед. наук. М., 1990. 198 с.
19. Armitage W.J., Juss B.K. The influence of cooling rate on survival of frozen cells differs in monolayers and in suspensions // Cryoletters. 1996. Vol. 17. P. 213–218.
20. Blobel G. 1999. www.nobel-laureates.com
21. Bourne W.M. Endothelial cell survival on transplanted human corneas preserved at 4 C in 2,5% chondroitin sulfate for one to 13 days // Am. J. Ophthalmol. 1986. Vol. 102. No 3. P. 382–386.
22. Bourne W.M. The endothelial cell assay method for the evaluation of corneal preservation // The Cornea: Tran- sactions of the World Congress on the Cornea III. New York, 1988. P. 111–114.
23. Bredehorn-Mayr T., Duncker G.I.W., Armitage W.J. Eye Banking // Developments in Ophthalmology. 2009. Vol. 43. P. 63–69.
24. Brunette I., Le Francois M., Tremblay M.C., Guertin M.C. Corneal transplant tolerance of cryopreservation // Cornea. 2001. Vol. 20. P. 590–596.
25. Doughman D.J. Prolonged donor presrvation in organ culture: long term clinical evaluation // Trans. Am. Oph- thalmol. Soc. 1980. Vol. 78. P. 567–628.
26. Doughman D.J., Van Horn D., Harris J.E. et al. The ult- rastructure of human organ–cultures cornea. I. Endoteli- um // Arch. Ophthalmol. 1974. Vol. 92. P. 516–523.
27. Farge E.J., Fort R.A., Wilhelmus K.R. et al. Morphologic changes of K-Sol preserved human corneas // Cornea. 1989. No 8. P. 159–169.
28. Heine H. Wissenschftliche Grundlagen der Organthera- pie // Tierarztliche Umschau. 1996. Vol. 51. P. 71–73.
29. Hsu J.K.W., Cavanagh H.D., Jester J.V. et al. Changes in corneal endothelial apical junctional protein organi- zation after corneal cold storage //Cornea. 1999. Vol. 18. No 6. P. 712–720
30. Hull D.S., Green K., Thomas L. Effect of HEPES buf- fer on corneal storage in MK medium // Acta opthalmol. 1984. Vol. 62. No 6. P. 900–910.
31. Hwang D.G. Proliferative Capacity of the Corneal Endo- thelium // V. World Cornea Congress. Washington, DC, 2005. P. 16.
32. Joseph K.W. Hsu, M.D., H. Dwight Cavanagh M.D. et al. Changes in Comeal Endothelial Apical Junctional Protein Organization After Corneal Cold Storage // Cor- nea. 1999. Vol. 18. Is.6. P. 712–720.
33. Kaufman H.E. Corneal cryopreservation and its clinical ap- plication // Transplant. Proc. 1976. Vol. 8. No 2. P. 149–152.
34. Kaufman H.E., Varnell E.D., Kaufman S. et al. K-Sol cor- neal preservation // Am. J. Ophthalmol. 1985. Vol. 100.
35. No 2. P. 299–304.
36. Kaufman H.E., Beuerman R.W., Steinemann T.L. et al. Optisol corneal storage medium // Arch. Ophthalmol.
37. Vol. 109. P. 864–868.
38. Krachmer J.H., Mannis M.J., Holland E.J. Cornea. Fundamentals, Diagnosis and Management: 2nd Edition. El-
39. sevier-Mosby, 2005. Vol. 1. 1409 p.
40. Maria B. Grant, Peng T. Khaw, Gregory S. Schultz, Julie L. Adams, Robert W. Shimizu. Effects of Epidermal Growth Factor, Fibroblast Growth Factor, and Transfor- ming Growth Factor-B on Corneal Cell Chemotaxis // Invest Ophthalmol Vis. Sci. 1992. Vol. 33. P. 3292–3301.
41. McCarey B.E, Kaufman H.E. Improved corneal sto- rage // Invest. Ophthalmol. 1974. Vol. 13. P. 165–173.
42. Melles G.R., Eggink F., Lander F. A surgical technique for posterior lamellar keratoplasty // Cornea. 1998. No 17. P. 618–626.
43. Sato E.H. Current Status of Corneal Storage // V. World Cornea Congress: Program abstracts. Washington, DC, 2005. P. 16.
44. Shin Y.J., Kim J.H., Seo J.M., Lee S.M., Hyon J.Y., Yu Y.S., Wee W.R. Protective effect of clusterin on oxidative stress-induced cell death of human corneal endothelial cells. // Mol Vis. 2009. Vol. 16. No 15. P. 2789–2795.
45. Sperling S., Olsen T., Ehlers N. Fresh and cultured cor- neal grafts compared by post-operative thickness and en- dothelial cell density // Acta ophthalmol. 1981. Vol. 59. No 4. P. 566–575.
46. Theurer K.E. Patent BRD: DR 1040748. Verfahren zur Gewinnung organspezifischer Fraktion aus Organgewe- ben. 20.05.57. In: Theurer K.E. Innovative Biotherapie: Fortschritte d. Zell-, Molekular- u. Immunobiologie. Stuttgart: Hippokrates Verlag. 1987. P. 227–230.
47. Tripathi B.J., Kwait P.S., Tripathi R.C. Corneal growth factors: a new generation of ophthalmic pharmaceuti- cals // Cornea. 1992. Vol. 9. P. 2–9.
48. Vincent P.T. Hoppenreijs, Elisabeth Pels, Gijs F.J. M. Vrensen , W. Frits Treffers. Basic fibroblast growth factor stimulates corneal endothelial cell growth and endotheli- al wound healing of human corneas // Invest Ophthalmol Vis Sci. 1994. Vol. 35. No. 3. P. 931–944.
49. Xin Gu, EunDuck P. Kay. Distribution and Putative Roles of Fibroblast Growth Factor-2 Isoforms in Corneal En- dothelial Modulation // Invest Ophthalmol Vis Sci. 1998. Vol. 39. No. 12. Р. 2252–2258.
Рецензия
Для цитирования:
Борзенок С.А., Ролик О.И., Онищенко Н.А., Комах Ю.А. О ВОЗМОЖНОСТИ СОВЕРШЕНСТВОВАНИЯ КОНСЕРВАЦИИ ДОНОРСКИХ РОГОВИЦ ПУТЕМ ПРИМЕНЕНИЯ РЕГУЛЯТОРНЫХ ПЕПТИДОВ. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2011;13(4):101-105. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2011-4-101-105
For citation:
Borzenok S.A., Rolik O.I., Onischenko N.A., Komakh Y.A. ABOUT IMPROVEMENT OF CORNEAL GRAFT PRESERVATION BY USING REGULATORY PEPTIDES. Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs. 2011;13(4):101-105. (In Russ.) https://doi.org/10.15825/1995-1191-2011-4-101-105
Просмотров: 667
Послать статью по эл. почте 