ГОСПИТАЛЬНАЯ МИКРОФЛОРА И БИОПЛЕНКИ
Аннотация
В обзоре изложены данные литературы о значении образования биопленок условнопатогенными бакте- риями в хирургии. Представлены сведения о микробном составе биопленок, архитектуре и физиологии. Обращено внимание на значение микробных сообществ, образующих биопленки, в хирургии. Разбира- ются механизмы повышенной резистентности биопленочных бактерий по сравнению с планктонными. Приводятся данные литературы о процессах образования биопленок на внутрисосудистых катетерах и методы их ингибиции и протекции. Излагаются методы изучения образования и подавления биопленок in vitro и in vivo на медицинских устройствах. Обсуждаются различные биотехнологические приемы, основанные на использовании антиадгезивных, антисептических, биофизических средств и биопрепара- тов, которые будут способствовать снижению и предупреждению инфекционных осложнений в хирургии и в трансплантологии.
Об авторах
Н. И. Габриэлян
ФГБУ «ФНЦ трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова» Минздрава России, г. Москва
Е. М. Горская
ФГБУ «ФНЦ трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова» Минздрава России, г. Москва
Н. И. Романова
ФГБУ «ФНЦ трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова» Минздрава России, г. Москва
О. М. Цирульникова
ФГБУ «ФНЦ трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова» Минздрава России, г. Москва
Список литературы
1. Бондаренко В.М., Рыбальченко О.В., Орлова О.Г. и др. Дезорганизация биопленок клинических штам- мов стафилококков метаболитами лактобацилл // Журн. микробиол. 2010. No 6. C. 66–70.
2. Габриэлян Н.И., Толпекин В.Е., Шумаков Д.В. и др. 30-летний опыт применения контрпульсации и обхо- да желудочков сердца: проблема инфекции // Вест- ник трансплантологии и искусственных органов. 2006. No 4. C. 80–82.
3. Гинцбург А.Л., Романова Ю.М. Бактериальные био- пленки как естественная форма существования бак- терий в окружающей среде и организме хозяина // Журн. микробиол. 2011. No 3. С. 99–109.
4. Голуб А.В. Новые возможности профилактики ин- фекций области хирургического вмешательства // Клиническая микробиология и антимикробная хи- миотерапия. 2011. No 1. С. 56–66.
5. Ильина Т.С., Романова Ю.М., Гинцбург А.Л. Систе- ма коммуникаций у бактерий и их роль в патоген- ности // Мол. генет. микробиол. вирусол. 2006. No 3. C. 22–29.
6. Караев З.О., Мамедова Л.Р. Влияние лекарственных препаратов на образование биопленок Candida al- bicans // Проблемы медицинской микологии. 2010. No 3. С. 10–12.
7. Кузнецова М.В. Формирование биопленок нозоко- миальными штаммами Pseudomonas aeruginosa // Журн. микробиол. 2011. No 4. C. 8–14.
8. Романова Н.И., Буданова Е.В., Спирина Т.С. и др. Спо- собность к биопленкообразованию у госпитальных микроорганизмов // Матер. X научно-практической конфер. «Внутрибольничные инфекции в стацио- нарах различного профиля, профилактика, лечение осложнений». М., 2012. С. 58–59.
9. Романова Ю.М., Диденко Л.В., Толордава Э.Р. и др. Биопленки патогенных бактерий и их роль в хро- низации инфекционного процесса. Поиск средств борьбы с биопленками // Вестник РАМН. 2011. No 10. С. 31–39.
10. Тец Г.В. Роль внеклеточной ДНК и липидов матрикса во взаимодействии бактерий биопленок с антибиоти- ками: Дис. ... канд. мед. наук. СПб.–М., 2007.
11. Чеботарь И.В., Маянский А.Н., Кончакова Е.Д. и др. Антибиотикорезистентность биопленочных бак- терий // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. 2012. Т. 14. No 1. С. 51–58.
12. Adam B., Baillie G.S., Douglas L.J. Mixed species bio- films on Candida albicans and Staphylococcus epidermi- dis // J. Med. Microbiol. 2002. Vol. 51. P. 344–349.
13. Azeredo J., Sutherland I.W. The use of phages for the re- moval of infectious biofilms //Curr. Pharm. Biotechnol. 2008. Vol. 9 (4). P. 261–266.
14. Balaban N., Cirioni O., Giacometti A. et al. Treatment of Staphylococcus aureus biofilm infection by the quorum- sensing inhibitor RIP // Antimicrob. Agents Chemother. 2007. Vol. 51. P. 2226–2229.
15. Balestrino D., Souweine B., Charbonnel N. et al. Era- dication of microorganisms embedded in biofilm by an ethanol-based catheter lock solution // Nephrol. Dial. Transplant. 2009. Vol. 24. P. 3204–3209.
16. Banin E., Brady K.M., Greenberg E.P. Chelator-induced dispersal and killing of Pseudomonas aeruginosa cells in a biofilm // Appl. Environ. Microbiol. 2006. Vol. 72 (3). P. 2064–2069.
17. Betjes M.G.H., van Agteren M. Prevention of dialysis ca- theter-related sepsis with a citrate-taurolidine-containing lock solution // Nephrol. Dial. Transplant. 2004. Vol. 19. P. 1546–1551.
18. Garcia I., Conejo M.C., Ojeda A. et al. A dynamic in vitro model for evaluating antimicrobial activity against bacterial biofilms using a new device and clinical used catheters // J. Microb. Methods. 2010. Vol. 83. P. 307– 311.
19. Budhani R.K., Struthers J.K. Interaction of Streptococ- cus pneumoniae and Moraxella catarrhalis investigation of the indirect pathogenic role of a beta-lactamase-pro- ducing Moraxella by use of a continous – culturebiofilm system // Antimicrob. Agents Chemother. 1998. Vol. 43. P. 2521–2526.
20. Burton E., Gawande P.V., Yakandawala N. et al. Anti- biofilm activity of GlmU enzyme inhibitors against catheter-associated uropathogens // Antimicrob Agents Chemother. 2006. Vol. 50. P. 1835–1840.
21. Carson L., Gorman S.P., Gilmore B.F. The use of lytic bacteriophages in the prevention and eradication of bio- films of Proteus mirabilis and Escherichia coli // FEMS Immunol Med Microbiol. 2010. Vol. 59 (3). P. 447–455.
22. Ciofu O. Pseudomonas aeruginosa chromosomal beta- lactamase in patiens with cystic fibrosis and chronic lung infection. Mechanism of antibiotic resistance and target of the humoral immune response // APMIS Suppl. 2003. Vol. 116. P. 41–47.
23. Costerton J.W., Stewardm P.S., Greenberg E.P. Bacterial biofilms: a common cause of persistent infections // Sci- ence. 1999. Vol. 284. P. 1318–1322.
24. Cotar A.I., Dinu S., Chifiriuc M.C. et al. Screening of molecular markers of quorum sensing in Pseudomonas aeruginosa strains isolated from clinical infections // Roum. Biotech. Letters. 2008. Vol. 13 (3). P. 3765–3770.
25. Curtin J.J., Donlan R.M. Using bacteriophages to redu- ce formation of catheter-associated biofilms by Staphy- lococcus epidermidis // Antimicrob Agents Chemother. 2006. Vol. 50. P. 1268–1275.
26. Davey M.E., O’Toolem G.A. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2000. Vol. 64. P. 847–867.
27. Davies D.G., Chakrabarty A.M., Geesey G.G. Exopoly- saccharide production in biofilms: substratum activation of alginate gene expression by Pseudomonas aerugino- sa // Appl. Environ. Microbiol. 1993. Vol. 59. P. 1181– 1186.
28. Davies D.G., Marques C.N.H. A fatty acid messenger is responsible for inducing dispersion in microbial bio- films // J. Bacteriol. 2009. Vol. 191. P. 1393–1403.
29. Donelli G. Vascular catheter-related infection and sep- sis // Surg Infect (Larchmt). 2006. Vol. 7 (Suppl 2). S. 5–7.
30. Donlan R.M., Costerton J.W. Biofilms: survival mecha- nisms of clinically relevant microorganisms // Clin. Mi- robiol. Rev. 2002. Vol. 15. P. 167–193.
31. Donlan R.M. Biofilm elimination on intravascular ca- theters: important consideration for the infectious di- sease practitioner // Healthcare epidemiology. 2011. Vol. 52 (15). P. 1038–1043.
32. Dunne W.M., Mason E.O., Kaplan S.L. Diffusion of ri- fampin and vancomicin through a Staphylococcus epi- dermidis biofilms // Antimicrob. Agents Chemoter. 1993. Vol. 37. P. 2522–2526.
33. Estivill D., Arias A., Torres-Lana A. et al. Biofilm formati- on by five species of Candida on three clinical materials // J. Microbiol. Methods. 2011. Vol. 86 (2). P. 238–242.
34. Hall-Stoodley L.J., Costerton W., Stoodley P. Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious di- seases // Nat. Rev. Microbiol. 2004. Vol. 2. P. 95–108.
35. Hentzer M., Teitzel G.M., Balzer G.J. et al. Alginate overproduction affects Pseudomonas aeruginosa bio- film structure and function // J. Bacteriol. 2001. Vol. 183. P. 5395–5401.
36. Holmberg A., Morgelin M., Rasmussen M. Effectiveness of ciprofloxacin or linezolid in combination with rifam- picin against Enterococcus faecalis in biofilms // J. Anti- microb. Chemoter. 2012. Vol. 67 (2). P. 433–439.
37. Keren I., Shah D., Spoering A. et al. Specialized persister cells and the mechanism of multidrug tolerance in Esche- richia coli // J. Bacteriol. 2004. Vol. 186. P. 8171–8180.
38. Khardori N., Yassien M. Biofilms in device-related infec- tions // J. Ind. Microbiol. 1995. Vol. 15 (3). P. 141–147.
39. Lazar V., Chifiriuc M.C. Architecture and physiology of microbial biofilms // Roum Arch Microbiol Immunol. 2010. Vol. 69 (2). P. 95–107.
40. Lazar V., Chifiriuc M.C. Medical significance and new therapeu tial strategies for biofilm associated infections // Roum Arch. Microbiol. Immunol. 2010. Vol. 69 (3). P. 125–138.
41. Mandsberg L.F., Ciofu O., Kirkby N. et al. Antibiotic re- sistance in Pseudomonas aeruginosa strains with incre- ased mutation frequency due to inactivation of the DNA oxidative repair system // Antimicrob. Agents Chemoter. 2009. Vol. 53. P. 2483–2491.
42. Metcalf S.C.L., Chambers S.T., Pithie A.D. Use of etha- nol locks to prevent recurrent central line sepsis // J. In- fect. 2004. Vol. 49. P. 20–22.
43. Nablo B.J., Prichard H.L., Butler R.D. et al. Inhibition of implant-associated infections via nitric oxide release // Biomaterials. 2005. Vol. 26. P. 6984–6990.
44. Percival S.L., Kite P., Eastwood K. et al. Tetrasodium EDTA as a novel central venous catheter lock soluti- on against biofilm // Infect. Control. Hosp. Epidemiol. 2005. Vol. 26. P. 515–519.
45. Raad I., Chatzinikolaou I., Chaiban G. et al. In vitro and ex vivo activities of minocycline and EDTA against mi- croorganisms embedded in biofilm on catheter surfaces // Antimicrob. Agents Chemother. 2003. Vol. 47 (11). P. 3580–3585.
46. Raad I.I., Fang X., Keutgen X.M. The role of chelators in preventing biofilm formation and catheter-related bloodstream infections // Curr. Opin. Infect. Dis. 2008. Vol. 21. P. 385–392.
47. Sha C.B., Mittelman M.W., Costerton J.W. et al. Antimi- crobial activity of a novel catheter lock solution // Anti- microb. Agents Chemother. 2002. Vol. 46. P. 1674–1679.
48. Simon A., Ammann R.A., Wiszniewsky G. et al. Tauroli- dine-citrate lock solution (TauroLock) significantly re- duces CVAD-associated gram positive infections in pe- diatric cancer patients // BMC Infect. Dis. 2008. Vol. 8. P. 102.
49. Street C.N., Gibbs A., Pedigo L. et al. In vitro photody- namic eradication of Pseudomonas aeruginosa in plank- tonic and biofilm culture // Photochem. Photobiol. 2009. Vol. 85 (1). P. 137–143.
50. Yu J., Wu J., Francis K.P. et al. Monitoring in vivo fitness of rifampicin-resistant Staphylococcus aureus mutants in a mouse biofilm infection model // J. Antimicrob. Che- mother. 2005. Vol. 55. P. 528–534.
Рецензия
Для цитирования:
Габриэлян Н.И., Горская Е.М., Романова Н.И., Цирульникова О.М. ГОСПИТАЛЬНАЯ МИКРОФЛОРА И БИОПЛЕНКИ. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2012;14(3):83-91. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2012-3-83-91
For citation:
Gabrielyan N.I., Gorskaya E.M., Romanova N.I., Tsirulnikova O.M. NOSOCOMIAL INFECTION AND MICROBIAL BIOFILMS IN SURGERY. Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs. 2012;14(3):83-91. (In Russ.) https://doi.org/10.15825/1995-1191-2012-3-83-91
Просмотров: 678
Послать статью по эл. почте 