ДЛИТЕЛЬНАЯ НОРМОТЕРМИЧЕСКАЯ КОНСЕРВАЦИЯ ЛИМБАЛЬНЫХ ТРАНСПЛАНТАТОВ КАК СПОСОБ ПОВЫШЕНИЯ КОЛИЧЕСТВА И АКТИВНОСТИ ММСК-ПОДОБНЫХ ЛИМБАЛЬНЫХ КЛЕТОК
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2012-2-77-85
Аннотация
Повышение надежности приживления трансплантатов роговицы в группе высокого риска может быть достигнуто при сочетанной трансплантации их с консервированными лимбальными трансплантатами. В работе изучено два способа консервации ЛТ: нормотермическая консервация в среде Борзенка–Мороз или стандартной культуральной среде в течение 35 суток и криоконсервация при –80 °С в среде Борзенка–Мороз с добавлением ДМСО и без добавления ДМСО в течение 1 месяца. Установлено, что длитель- ная нормотермическая консервация (в течение 28 суток) и криоконсервация сохраняют жизнеспособность клеток ЛТ, способность поддерживать цитокиновый баланс, а также сохранять фенотип ММСК и активизировать толерогенные свойства лимбальных клеток, что может улучшить качество и повысить надежность приживления трансплантата роговицы без системной иммуносупрессии.
Об авторах
С. А. БорзенокН. А. Онищенко
Х. Д. Тонаева
Ю. А. Комах
В. С. Сускова
С. И. Сусков
Л. В. Диденко
Н. В. Шевлягина
Е. А. Кост
Список литературы
1. Балаян Т.Г. Дифференцированная тактика иммуно- супрессивного лечения при кератопластике высоко- го риска: Автореф. дис. ... канд. мед. наук. М., 2008. С. 23–24.
2. Борзенок С.А. Медико-технологические и методоло- гические основы эффективной деятельности глазных тканевых банков России в обеспечении операций по сквозной трансплантации роговицы: Дис. ... докт. мед. наук. М. 2008. С. 240–259.
3. Готье С.В. Иммуносупрессия при трансплантации солидных органов. Тверь: Триада, 2011. С. 472.
4. Кротова Е.В. Клинико-иммунологические аспекты ре- кератопластики различными видами донорского мате- риала: Автореф. дис. ... канд. мед. наук. М. 1994. С. 24.
5. Онищенко Н.А., Артамонов С.Д., Крашенинников М.Е. и др. Клетки костного мозга донора как регуляторы иммунной толерантности в организме реципиента при аллогенной пересадке органов // Вестник транспланто- логии и искусственных органов. 2009. No 4. С. 97–102.
6. Шумаков В.И., Онищенко Н.А. Биологические резер- вы клеток костного мозга и коррекция органных дис- функций. М.: Лавр, 2009. С. 49–100.
7. Aggarwal S., Pittenger M.F. Human mesenchymal stem cells modulate allogeneic immune cell responses // Blood. 2005. Vol. 105. P. 1815–1822.
8. Ardjomand N., Berghold A., Reich M.E. Loss of corne- al Langerhans cells during storage in organ culture me- dium, Optisol and McCarey-Kaufman medium // Eye. 1998. Vol. 12. P. 134–138.
9. Du Y., Funderburgh M.L., Mann M.M. et al. Multipotent stem cells in human corneal stroma // Stem Cells. 2005. Vol. 23. P. 1266–1275.
10. Dua H.S., Azuara-Blanco A.A. Allolimbal transplantati- on in patients with limbal stem cell deficiency // Br. J. Ophtalmol. 1999. Vol. 83. P. 414–419.
11. Grueterich M., Scheffer C., Tseng G. Human Limbal Progenitor Cells Expanded on Intact Amniotic Membra- ne ex vivo // Arch. Ophthalmol. 2002. Vol. 120. P. 783– 790.
12. Holland E.J., DeRuyter D.N., Doughman D.J. Langer- hans cells in organ-cultured corneas // Arch. Ophthal- mol. 1987. Vol. 105. P. 542–545.
13. Kenyon K.R., Tseng S.C.G. Limbal autograft transplanta- tion for ocular surface disorders // Ophthalmology. 1989. Vol. 96. P. 709–723.
14. Koizumi N., Cooper L.J., Fullwood N.J. et al. An evalu- ation of cultivated corneal limbal epithelial cells, using
15. cell-suspension culture // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci.
16. Vol. 43, No 7. P. 2114–2121.
17. Majumdar M.K., Keane-Moore M., Buyaner D. et al.
18. Characterization and functionality of cell surface mole- cules on human mesenchymal stem cells // J. Biomed. Sci. 2003. Vol. 10. P. 228–241.
19. Pleyer U., Bertelmann E. Differential diagnosis and the- rapy of graft rejection after keratoplasty // Klin. Monats- bl. Augenheilkd. 2005. Vol. 222. No 11. Р. 863–869.
20. Polisetty N., Fatima A., Madhira S.L. et al. Mesenchy- mal cells from limbal stroma of human eye // Mol. Vis. 2008. Vol. 14. P. 431–442.
21. Pricola K.L., Haleem-Smith H., Song Y. Interleukin-6 supports the bone marrow-derived mesenchymal stem cell stemness of ERK1/2-dependent mechanism // J. of Cellular Biochemistry. 2009. Vol. 108. P. 577–588.
22. Starzl T.E. Chimerism and tolerance in transplantation // PNAS. 2004. Vol. 101, No 2. Р. 14607–14614.
23. Zito-Abbad E., Borderie V.M., Baudrimont M. et al. Cor- neal epithelial cultures generated from organ-cultured limbal tissue: factors influencing epithelial cell growth // Curr. Eye Res. 2006. May. Vol. 31, No 5. Р. 391–399.
Рецензия
Для цитирования:
Борзенок С.А., Онищенко Н.А., Тонаева Х.Д., Комах Ю.А., Сускова В.С., Сусков С.И., Диденко Л.В., Шевлягина Н.В., Кост Е.А. ДЛИТЕЛЬНАЯ НОРМОТЕРМИЧЕСКАЯ КОНСЕРВАЦИЯ ЛИМБАЛЬНЫХ ТРАНСПЛАНТАТОВ КАК СПОСОБ ПОВЫШЕНИЯ КОЛИЧЕСТВА И АКТИВНОСТИ ММСК-ПОДОБНЫХ ЛИМБАЛЬНЫХ КЛЕТОК. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2012;14(2):77-85. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2012-2-77-85
For citation:
Borzenok S.A., Onischenko N.A., Tonaeva Kh.D., Komakh Y.A., Suskova V.S., Suskov S.I., Didenko L.V., Shevlyagina N.V., Kost E.A. LONG-TERM (OF MANY DAYS) NORMOTHERMAL LIMBAL GRAFTS PRESERVATION AS A METHOD OF QUANTITY AND ACTIVITY INCREASE OF MMSC-LIKE LIMBAL CELLS. Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs. 2012;14(2):77-85. (In Russ.) https://doi.org/10.15825/1995-1191-2012-2-77-85