Preview

Вестник трансплантологии и искусственных органов

Расширенный поиск

Разработка подходов к бесферментному получению островковой ткани из поджелудочной железы

https://doi.org/10.15825/1995-1191-2022-1-48-55

Полный текст:

Аннотация

Успешность аллотрансплантации островков поджелудочной железы при лечении пациентов с трудноуправляемым течением сахарного диабета 1-го типа зависит главным образом от количества и качества островков, изолируемых из поджелудочной железы посмертных доноров с помощью ферментных препаратов, прежде всего коллагеназы. Многочисленные исследования по совершенствованию и стандартизации методов выделения островков достигли в последнее десятилетие предела своих возможностей, что сделало невозможным дальнейшее увеличение количества и качества клинических трансплантаций. Учитывая негативное влияние применения коллагеназной техники на морфофункциональные свойства изолируемых островков, в настоящей работе изучена возможность бесферментного получения островковой ткани, очищенной от экзокринного балласта. Эксперименты, проведенные с использованием поджелудочной железы новорожденных и молодых кроликов, показали реальность разработки методических подходов к получению островковоподобных культур без применения экзогенных ферментов.

Об авторах

Г. Н. Скалецкая
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова» Минздрава России
Россия

Скалецкая Галина Николаевна

23182, Москва, ул. Щукинская, д. 1.

Тел.: (499) 190-42-66; (903) 771-18-13



Н. Н. Скалецкий
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова» Минздрава России
Россия

Москва



Г. Н. Бубенцова
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова» Минздрава России
Россия

Москва



В. И. Севастьянов
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова» Минздрава России

Москва



Список литературы

1. Shapiro AM, Lakey JR, Ryan EA, Korbutt GS, Toth E, Warnock GL et al. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. N Engl J Med. 2000; 343: 230–238.

2. Barton FB, Rickels MR, Alejandro R, Hering BJ, Wease S, Naziruddin B et al. Improvement in outcomes of clinical islet transplantation: 1999–2010. Diabetes Care. 2012; 35: 1436–1445.

3. Misawa R, Ricordi C, Miki A, Barker S, Molano RD, Khan A et al. Evaluation of viable beta-cell mass is useful for selecting collagenase for human islet isolation: comparison of collagenase NB1 and liberase HI. Cell Transplant. 2012; 21: 39–47.

4. Linetsky E, Bottino R, Lehmann R, Alejandro R, Inverardi L, Ricordi C. Improved human islet isolation using a new enzyme blend, liberase. Diabetes. 1997; 46: 1120– 1123.

5. Alejandro R, Barton FB, Hering BJ, Wease S. 2008 Update from the Collaborative Islet Transplant Registry. Transplantation. 2008; 86: 1783–1788.

6. Sabek OM, Cowan P, Fraga DW, Gaber AO. The effect of isolation methods and the use of different enzymes on islet yield and in vivo function. Cell Transplant. 2008; 17: 785–792.

7. Bertuzzi F, Cainarca S, Marzorati S, Bachi A, Antonioli B, Nano R et al. Collagenase isoforms for pancreas digestion. Cell Transplant. 2009; 18: 203–206.

8. Szot GL, Lee MR, Tavakol MM, Lang J, Dekovic F, Kerlan RK et al. Successful clinical islet isolation using a GMP-manufactured collagenase and neutral protease. Transplantation. 2009; 88: 753–756.

9. Wang Y, Paushter D, Wang S, Barbaro B, Harvat T, Danielson K et al. Highly purified versus filtered crude collagenase: comparable human islet isolation outcomes. Cell Transplant. 2011; 20: 1817–1825. PMID: 21396158.

10. Kayton S, Poffenberger G, Henske J, Dai Ch, Thompson C, Aramandla R et al. Human islet preparations distributed for research exhibit a variety of insulin-secretory profiles. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2015 Apr 1; 308 (7): E592–E602. doi: 10.1152/ajpendo.00437.2014.

11. Rheinheimer J, Klarmann Ziegelmann P, Carlessi R, Ross Reck L, Bauer AC, Leitão B. Different digestion enzymes used for human pancreatic islet isolation: A mixed treatment comparison (MTC) meta-analysis. Islets. 2014; 6 (4): e977118. Published online 2014 Nov 7.

12. Khatri R, Hussmann B, Rawat D, Gürol AO, Linn T. Intraportal Transplantation of Pancreatic Islets in Mouse Model. J Vis Exp. 2018 May 5; (135): 57559. doi: 10.3791/57559.

13. Saliba Y, Farès N. Isolation, Purification, and Culture of Mouse Pancreatic Islets of Langerhans. Methods Mol Biol. 2019; 1940: 255–265. doi: 10.1007/978-1-4939- 9086-3_18. PMID: 30788831.

14. Corbin KL, West HL, Brodsky S, Whitticar NB, Koch WJ, Nunemaker CS. A Practical Guide to Rodent Islet Isolation and Assessment Revisited. Biol Proced Online. 2021 Mar 1; 23 (1): 7. doi: 10.1186/s12575-021-00143-x. PMID: 33641671.

15. Dietrich I, Girdlestone J, Giele H. Differential cytokine expression in direct and indirect co-culture of islets and mesenchymal stromal cells. Cytokine. 2021 Dec 17; 150: 155779. doi: 10.1016/j.cyto.2021.155779.

16. Hubber EL, Rackham CL, Jones PM. Protecting islet functional viability using mesenchymal stromal cells. Stem Cells Transl Med. 2021 May; 10 (5): 674–680. doi: 10.1002/sctm.20-0466.

17. Brandhorst D, Brandhorst H, Johnson PRV. Enzyme Development for Human Islet Isolation: Five Decades of Progress or Stagnation? Rev Diabet Stud. 2017 Spring; 14 (1): 22–38.

18. Gorelick FS, Otani T. Mechanisms of intracellular zymogen activation. Baillieres Best Pract Res Clin Gastroenterol. 1999; 13 (2): 227–240.

19. Piton G, Barbot O, Manzon C, Moronval F, Patry C, Navellou JC et al. Acute ischemic pancreatitis following cardiac arrest: a case report. JOP. 2010; 11 (5): 456–459.

20. Dembinski A, Warzecha Z, Ceranowicz P, Tomaszewska R, Dembinski M, Pabianczyk M et al. Ischemic preconditioning reduces the severity of ischemia/reperfusion-induced pancreatitis. Eur J Pharmacol. 2003; 473 (2–3): 207–216.

21. Trimble ER. In: Lanza RP, Chick WL. Pancreatic islet transplantation. 1994. Pancreatic islet-acinar relationships; 19–25.

22. van Deijnen JH, Hulstaert CE, Wolters GH, van Schilfgaarde R. Significance of the peri-insular extracellular matrix for islet isolation from the pancreas of rat, dog, pig, and man. Cell Tissue Res. 1992; 267 (1): 139–146.

23. van Suylichem PT, van Deijnen JE, Wolters GH, van Schilfgaarde R. Amount and distribution of collagen in pancreatic tissue of different species in the perspective of islet isolation procedures. Cell Transplant. 1995; 4 (6): 609–614.

24. Otonkoski T, Banerjee M, Korsgren O, Thornell LE, Virtanen I. Unique basement membrane structure of human pancreatic islets: implications for beta-cell growth and differentiation. Diabetes Obes Metab. 2008; 10 (Suppl): 119–127.

25. Jiang FX, Naselli G, Harrison LC. Distinct distribution of laminin and its integrin receptors in the pancreas. J Histochem Cytochem. 2002; 50 (12): 1625–1632.


Дополнительные файлы

1. Скалецкая. Подписи к рисункам.
Тема
Тип Прочее
Скачать (17KB)    
Метаданные

Рецензия

Для цитирования:


Скалецкая Г.Н., Скалецкий Н.Н., Бубенцова Г.Н., Севастьянов В.И. Разработка подходов к бесферментному получению островковой ткани из поджелудочной железы. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2022;24(1):48-55. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2022-1-48-55

For citation:


Skaletskaya G.N., Skaletskiy N.N., Bubentsova G.N., Sevastianov V.I. Development of approaches to enzyme-free isolation of pancreatic islets. Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs. 2022;24(1):48-55. (In Russ.) https://doi.org/10.15825/1995-1191-2022-1-48-55

Просмотров: 74


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1995-1191 (Print)
ISSN 2412-6160 (Online)