Функциональная эффективность клеточно‑инженерной конструкции поджелудочной железы в экспериментальной модели сахарного диабета I типа
https://doi.org/10.15825/1995-1191-2024-2-94-104
Аннотация
Создание клеточно-инженерной конструкции поджелудочной железы (КИК ПЖ), сформированной на основе островков Лангерганса и биосовместимого матрикса-носителя (каркаса/скаффолда), имитирующего нативное микроокружение панкреатической ткани, является одним из подходов к лечению пациентов с сахарным диабетом I типа (СД I).
Целью работы был сравнительный анализ функциональной эффективности КИК ПЖ и изолированных островков Лангерганса крысы после их внутрибрюшинного введения крысам с экспериментальным СД I.
Материалы и методы. СД I у крыс индуцировали введением малых доз (15 мг/кг) стрептозотоцина в течение 5 суток. Образцы КИК ПЖ формировали на основе жизнеспособных и функциональных аллогенных изолированных островков Лангерганса и тканеспецифического скаффолда, полученного в результате децеллюляризации фрагментов ПЖ человека. Крысам проводили внутрибрюшинное введение аллогенных островков Лангерганса (опытная группа 1, n = 4) и КИК ПЖ (опытная группа 2, n = 4). Крысам контрольной группы лечение не проводили (n = 4). Оценивали уровень глюкозы в крови крыс, а также проводили гистологическое исследование органов (поджелудочная железа и почки) экспериментальных животных. Наблюдение за всеми животными продолжалось в течение 10 недель.
Результаты. В опытной группе 1 на седьмые сутки после введения островков Лангерганса отмечали заметное снижение уровня гликемии – с 28,2 ± 4,2 до 13,4 ± 2,6 ммоль/л, которое сохранялось на протяжении 7 недель, после чего происходило повышение гликемии до уровней, близких к исходным значениям (до введения островков). В опытной группе 2 на седьмые сутки после введения КИК ПЖ отмечали более выраженное по сравнению с опытной группой 1 снижение гликемии – с 25,8 ± 5,1 до 6,3 ± 2,7 ммоль/л. Уровень глюкозы к 10-й неделе эксперимента был ниже исходного в среднем в 2 раза. Установлено более выраженное снижение концентрации глюкозы в крови крыс-реципиентов после введения образцов КИК ПЖ по сравнению с уровнем гликемии крыс-реципиентов после введения суспензии островков (на 75,6 и 52,5% соответственно).
Заключение. Введение КИК ПЖ оказывает более выраженный антидиабетический эффект у крыс с СД I по сравнению с введением островков Лангерганса. Таким образом, показана перспективность использования тканеспецифического скаффолда для создания биоискусственной ПЖ с целью повышения функциональной эффективности островков.
Об авторах
Н. В. БарановаРоссия
Баранова Наталья Владимировна
123182, Москва, ул. Щукинская, д. 1
Тел. (917) 568-98-22
А. С. Пономарева
Россия
Москва
Л. А. Кирсанова
Россия
Москва
А. О. Никольская
Россия
Москва
Г. Н. Бубенцова
Россия
Москва
Ю. Б. Басок
Россия
Москва
В. И. Севастьянов
Россия
Москва
Список литературы
1. Shapiro AM, Pokrywczynska AM, Ricordi C. Clinical pancreatic islet transplantation. Nat Rev Endocrinol. 2017; 13 (5): 268–277. doi: 10.1038/nrendo.2016.178.
2. Cayabyab F, Nih LR, Yoshihara E. Advances in Pancreatic Islet Transplantation Sites for the Treatment of Diabetes. Front Endocrinol (Lausanne). 2021; 12: 732431. doi: 10.3389/fendo.2021.732431.
3. Reid L, Faye Baxter F, Forbes S. Effects of islet transplantation on microvascular and macrovascular complications in type 1 diabetes. Diabet Med. 2021; 38 (7): e14570. doi: 10.1111/dme.14570.
4. Eguchi N, Damyar K, Alexander M, Dafoe D, Lakey JRT, Ichii H. Anti-Oxidative Therapy in Islet Cell Transplantation. Antioxidants (Basel). 2022; 11 (6): 1038. doi: 10.3390/antiox11061038.
5. Amer LD, Mahoney MJ, Bryant SJ. Tissue engineering approaches to cell-based type 1 diabetes therapy. Tissue Eng Part B Rev. 2014; 20 (5): 455–467. doi: 10.1089/ten.TEB.2013.0462.
6. Mirmalek-Sani S-H, Orlando G, McQuilling JP, Pareta R, Mack DL, Salvatori M et al. Porcine pancreas extracellular matrix as a platform for endocrine pancreas bioengineering. Biomaterials. 2013; 34 (22): 5488–5495. doi: 10.1016/j.biomaterials.2013.03.054.
7. Abualhassan N, Sapozhnikov L, Pawlick RL, Kahana M, Pepper AR, Bruni A et al. Lung-derived microscaffolds facilitate diabetes reversal after mouse and human intraperitoneal islet transplantation. PLoS One. 2016; 11 (5): e0156053. doi: 10.1371/journal.pone.0156053.
8. Damodaran G, Vermette P. Decellularized pancreas as a native extracellular matrix scaffold for pancreatic islet seeding and culture. J Tissue Eng Regen Med. 2018; 12 (5): 1230–1237; doi: 10.1002/term.2655.
9. Lim LY, Ding SSL, Muthukumaran P, Teoh SH, Koh Y, Teo AKK. Tissue engineering of decellularized pancreas scaffolds for regenerative medicine in diabetes. Acta Biomater. 2023; 157: 49–66. doi: 10.1016/j.actbio.2022.11.032.
10. Wu D, Wan J, Huang Y, Guo Y, Xu T, Zhu M et al. 3d Culture of MIN-6 Cells on Decellularized Pancreatic Scaffold: In Vitro and In Vivo Study. Biomed Res Int. 2015; 2015: 432645. doi: 10.1155/2015/432645.
11. Goh S-K, Bertera S, Olsen P, Candiello JE, Halfter W, Uechi G et al. Perfusion-Decellularized Pancreas As A Natural 3d Scaffold For Pancreatic Tissue And Whole Organ Engineering. Biomaterials. 2013; 34 (28): 6760– 6772. doi: 10.1016/J.Biomaterials.2013.05.066.
12. Sabetkish S, Kajbafzadeh AM. The Most Ideal Pancreas Extracellular Matrix as a Platform for Pancreas Bioengineering: Decellularization/Recellularization Protocols. Adv Exp Med Biol. 2021; 1345: 61–70. doi: 10.1007/9783-030-82735-9_6.
13. Biomimetics of Extracellular Matrices for Cell and Tissue Engineered Medical Products / Eds. Victor I. Sevastianov and Yulia B. Basok. – Newcastle upon Tyne, UK: Cambridge Scholars Publishing, 2023; 339.
14. Sevastianov VI, Ponomareva AS, Baranova NV, Kirsanova LA, Basok YuB, Nemets EA et al. Decellularization of Human Pancreatic Fragments with Pronounced Signs of Structural Changes. Int J Mol Sci. 2023; 24 (1): 119. doi: 10.3390/ijms24010119.28.
15. Napierala H, Hillebrandt K-H, Haep N, Tang P, Tintemann M, Gassner J et al. Engineering an endocrine neopancreas by repopulation of a decellularized rat pancreas with islets of Langerhans. Sci Rep. 2017 Feb 2; 7: 41777. doi: 10.1038/srep41777.
16. Скалецкая ГН, Скалецкий НН, Кирсанова ЛА, Бубенцова ГН, Волкова ЕА, Севастьянов ВИ. Экспериментальная имплантация тканеинженерной конструкции поджелудочной железы. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2019; 21 (2): 104–111. doi: 10.15825/1995-1191-2019-2-104-111.
17. Пономарева АС, Баранова НВ, Никольская АО, Кирсанова ЛА, Онищенко НА, Гоникова ЗЗ и др. Внутрибрюшинное введение клеточно-инженерной конструкции поджелудочной железы крысам с экспериментальным сахарным диабетом (предварительные результаты). Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2023; 25 (2): 107–117.
18. Smink AM, de Vos P. Therapeutic strategies for modulating the extracellular matrix to improve pancreatic islet function and survival after transplantation. Curr Diab Rep. 2018; 18 (7): 39. doi: 10.1007/s11892-018-1014-4.
Рецензия
Для цитирования:
Баранова Н.В., Пономарева А.С., Кирсанова Л.А., Никольская А.О., Бубенцова Г.Н., Басок Ю.Б., Севастьянов В.И. Функциональная эффективность клеточно‑инженерной конструкции поджелудочной железы в экспериментальной модели сахарного диабета I типа. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2024;26(2):94-104. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2024-2-94-104
For citation:
Baranova N.V., Ponomareva A.S., Kirsanova L.A., Nikolskaya A.O., Bubentsova G.N., Basok Yu.B., Sevastianov V.I. Functional efficiency of pancreatic cell-engineered construct in an animal experimental model for type I diabetes. Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs. 2024;26(2):94-104. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2024-2-94-104