Формирование опорно-двигательной культи глазного яблока с помощью тканеинженерной конструкции из никелида титана и аутологичных мононуклеарных лейкоцитов крови

Цель: в эксперименте in vivo изучить морфологические особенности формирования опорно-двигательной культи глазного яблока с помощью тканеинженерной конструкции из никелида титана и суспензии аутологичных мононуклеарных лейкоцитов крови. Материалы и методы. Выполнена серия экспериментов на 54 половозрелых крысах породы Wistar весом 200–250 г, которые в зависимости от вида оперативного вмешательства были разделены на 3 группы: 1-я группа (n = 18) – животным после эвисцероэнуклеации формировали опорно-двигательную культю глазного яблока путем имплантации в склеральный мешок тканеинженерной конструкции из никелид титана и суспензии аутологичных мононуклеарных лейкоцитов крови; 2-я группа (n = 18) – опорно-двигательную культю глаза формировали путем имплантации никелида титана в склеральный мешок; 3-я группа (n = 18) – опорно-двигательную культю формировали с помощью имплантата из биоматериала «Аллоплант». Результаты. Установлено, что у животных 1-й группы на 7-е сутки после операции удельный объем соединительной ткани был в 7,9 раза (р_U = 0,048) выше, чем у животных 2-й группы и в 15,8 раза (р_U = 0,039) выше, чем у животных 3-й группы. На 14-е сутки после операции объем соединительной ткани в опорно-двигательной культе глазного яблока у крыс 1-й группы достигал наибольшего значения по сравнению с таковым у крыс остальных групп. Численная плотность новообразованных сосудов в опорно-двигательной культе глазного яблока у крыс 1-й группы, начиная с 14-х суток после операции и до завершения эксперимента (21-е сутки), статистически значимо превышала таковую у животных остальных групп. При этом на 21-е сутки у крыс 1-й группы данный показатель в 4,0 раза (р_U = 0,001) был выше, чем у животных 2-й группы, и в 9,8 раза (р_U = 0,0003) выше, чем у животных 3-й группы. Заключение. Имплантация тканеинженерной конструкции из никелида титана и суспензии аутологичных мононуклеарных лейкоцитов крови в склеральный мешок после эвисцероэнуклеации в эксперименте in vivo сопровождается ускоренным созреванием соединительной ткани и интенсивной васкуляризацией в опорно-двигательной культе глазного яблока, что обеспечивает прочную фиксацию имплантата и снижает риск его отторжения.

мононуклеарные лейкоциты крови, опорно-двигательная культя глазного яблока, тканеинженерная конструкция, никелид титан, клеточные технологии

1. Schmitzer S, Simionescu C, Alexandrescu C, Burcea M. The Anophthalmic Socket – Reconstruction Options. Journal of Medicine and Life. 2014; 7 (Spec Iss 4): 23–29.

2. Бараш АН, Шаршакова ТМ, Малиновский ГФ. Медико-социальные проблемы при анофтальмическом синдроме. Проблемы здоровья и экологии. 2015; 44 (2): 4–7.

3. Лузьянина ВВ. Особенности офтальмопластики для глазного протезирования. Тихоокеанский медицинский журнал. 2016; 3 (65): 32–36. doi: 10.17238/PmJ1609-1175.2016.3.32–36.

4. Bohman E, Roed Rassmusen ML, Kopp ED. Pain and discomfort in the anophthalmic socket. Curr Opin Ophthalmol. 2014; 25 (5): 455–460. doi: 10.1097/ICU.0000000000000069.

5. Иволгина ИВ. Особенности применения различных имплантатов при формировании опорно-двигательной культи после энуклеации. Вестник ТГУ. 2015; 20 (3): 577–579.

6. Мезен НИ. Стволовые клетки: учеб.-метод. пособие. Минск: БГМУ, 2014: 62.

7. Гилевич ИВ, Поляков ИС, Порханов ВА, Чехонин ВП. Морфологический анализ биологической совместимости аутологичных костных мононуклеарных клеток с синтетическим каркасом на основе полиэтилентерефталата. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2017; 163 (3): 388–392. doi: 10.1007/s10517-017-3813-z.

8. Лызиков АН, Осипов ББ, Скуратов АГ, Призенцов АА. Стволовые клетки в регенеративной медицине: достижения и перспективы. Проблемы здоровья и экологии. 2015; 45 (3): 4–9. L

9. Рябов СИ, Звягинцева МА, Осидак ЕО, Смирнов ВА. Коллагеновый имплантат и мононуклеарные клетки пуповинной крови позволяют восстановить движение задних конечностей после удаления участка спинного мозга. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2017; 164 (9): 377–380.

10. Суббот АМ, Каспарова ЕА. Обзор подходов к клеточной терапии в офтальмологии. Вестник офтальмологии. 2015; 5: 74–81.

11. Bedian L, Rodriguez AMV, Vargas GH, Parra-Saldivar R, Iqbal HM. Bio-based materials with novel characteristics for tissue engineering applications – a review. Int J Biol Macromol. 2017; 98: 837– 846. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2017.02.048.

12. Li MD, Atkins H, Bubela T. The global landscape of stem cell clinical trials. Regen Med. 2014 Jan; 9 (1): 27–39. doi: 10.2217/rme.13.80.

13. Гюнтер ВЭ, Ходоренко ВН, Чекалкин ТЛ, Олесова ГЦ, Дамбаев ПГ, Сысолятин НГ и др. Медицинские материалы с памятью формы. Томск: МИЦ, 2011: 534.

14. Еричев ВП, Петров СЮ, Суббот АМ, Волжанин АВ, Германова ВН, Карлова ЕВ. Роль цитокинов в патогенезе глазных болезней. Национальный журнал «Глаукома ». 2017; 16 (1): 87–101.

15. Хлусов ИА, Нечаев КА, Дворниченко МВ, Хлусова МЮ, Рязанцева НВ, Савельева ОВ и др. Молекулярные механизмы реакции стромальных стволовых клеток и мононуклеарных лейкоцитов крови на кратковременный контакт с искусственными материалами. Вестник науки Сибири. 2012; 1: 321–327.

16. Атькова ЕЛ, Рейн ДА, Ярцев ВД, Суббот АМ. Влияние цитокина TGF-бета и других факторов на процесс регенерации. Вестник офтальмологии. 2017; 4: 89–96.