vtioВестник трансплантологии и искусственных органовRussian Journal of Transplantology and Artificial Organs1995-1191Academician V.I.Shumakov National Medical Research Center of Transplantology and Artificial Organs", Ministry of Health of the Russian Federation10.15825/1995-1191-2011-1-61-64vtio-360Research ArticleТрансплантомикаTransplantomicsПОДЖЕЛУДОЧНАЯ ЖЕЛЕЗА НОВОРОЖДЕННЫХ КРОЛИКОВ КАК ИСТОЧНИК ПРОГЕНИТОРНЫХ КЛЕТОКTHE PANCREAS OF NEWBORN RABBITS AS A SOURCE OF PROGENITOR CELLSКирсановаЛ. А.KirsanovaL. A.БарановаН. В.BaranovaN. V.СкалецкийН. Н.SkaletskyN. N.ЗайденовВ. А.ZaidenovV. A.zaidenov@gmail.comБубенцоваГ. Н.BubentsovaG. N.ПушковаИ. А.PushkovaI. A.ФГУ «Федеральный научный центр трансплантологии и искусственных органов им. акад. В.И. Шумакова» Минздравсоцразвития РФ, МоскваРоссияAcademician V.I. Shumakov Federal Research Center of Transplantology and Artificial Organs, MoscowRussian Federation201109062014131ВЕСТНИК ТРАНСПЛАНТОЛОГИИ И ИСКУССТВЕННЫХ ОРГАНОВ том XIII No 1–20116164Copyright © Кирсанова Л.А., Баранова Н.В., Скалецкий Н.Н., Зайденов В.А., Бубенцова Г.Н., Пушкова И.А., 20112011Кирсанова Л.А., Баранова Н.В., Скалецкий Н.Н., Зайденов В.А., Бубенцова Г.Н., Пушкова И.А.Kirsanova L.A., Baranova N.V., Skaletsky N.N., Zaidenov V.A., Bubentsova G.N., Pushkova I.A.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/360

Поджелудочная железа новорожденных кроликов была использована в качестве источника получения протоковых клеток. Эти клетки, обладая свойствами прогениторных, сохраняют способность к диффе- ренцировке in vivo и in vitro и могут служить дополнительным альтернативным источником островко- вых клеток для трансплантации больным сахарным диабетом. Наш метод основан на культивировании микрофрагментов панкреатической ткани без предварительного выделения островков и отдельных про- токов. В стандартных условиях путем подбора режима культивирования удалось получить стабильное формирование монослоя протокового эпителия, клетки которого активно экспрессировали специфиче- ский маркер цитокератин 19. 

The newborn rabbit pancreas was used as a source of ductal epithelial cells. Our approach includes the cultiva- tion of pancreatic tissue microfragments without preliminary islet and duct isolation. Under ordinary conditions we found the epithelial pancreatic cell monolayer. The cultivated monolayer cells were shown by immunofluo- rescence to express special ductal cytokeratin 19 and were insulin- and glucagon-negative for 7–15 days. 

поджелудочная железакультивированиемонослой протокового эпителияrabbit pancreasductal cell monolayerprogenitor cellsReferencesБелецкая Л.В., Махнева Н.В. Меченые антитела в нор- мальной и патологической морфологии. М., 2000. С. 11.Белецкая Л.В., Махнева Н.В. Меченые антитела в нор- мальной и патологической морфологии. М., 2000. С. 11.Казанцева И.А., Гуревич Л.Е. Роль полипотентных клеток в развитии опухолей поджелудочной желе-Казанцева И.А., Гуревич Л.Е. Роль полипотентных клеток в развитии опухолей поджелудочной желе-зы // Архив патологии. 2006. Т. 68. No 2. С. 51–56.зы // Архив патологии. 2006. Т. 68. No 2. С. 51–56.Скалецкий Н.Н., Кирсанова Л.А., Блюмкин В.Н. По- лучение культур островковых клеток из поджелудоч- ной железы и их трансплантация // Проблемы транс- плантологии и искусственных органов. М., 1994.Скалецкий Н.Н., Кирсанова Л.А., Блюмкин В.Н. По- лучение культур островковых клеток из поджелудоч- ной железы и их трансплантация // Проблемы транс- плантологии и искусственных органов. М., 1994.С. 73–80.С. 73–80.Bhattacharyya E., Panchal A., Wilkins T.J. at al. Insulin, transforming growth factors, and substrates modulate growth of guinea pig pancreatic duct cells in vitro // Gas- troenterology. 1995. Vol. 109, No 3. Р. 944–952.Bhattacharyya E., Panchal A., Wilkins T.J. at al. Insulin, transforming growth factors, and substrates modulate growth of guinea pig pancreatic duct cells in vitro // Gas- troenterology. 1995. Vol. 109, No 3. Р. 944–952.Bonner-Weir S., Tanega M.,Weir G.S. et al. In vitro cultivation of human islets from expended ductal tis- sue // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. Vol. 97, No 14. Р. 7999–8004.Bonner-Weir S., Tanega M.,Weir G.S. et al. In vitro cultivation of human islets from expended ductal tis- sue // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. Vol. 97, No 14. Р. 7999–8004.Bonner-Weir S., Sharma A. Are the pancreatic pro- genitor cells from wich new islets form after birth? // Nat. Clin. Pract. Endocrinol. Metab. 2006. Vol. 2, No 5. Р. 240–241.Bonner-Weir S., Sharma A. Are the pancreatic pro- genitor cells from wich new islets form after birth? // Nat. Clin. Pract. Endocrinol. Metab. 2006. Vol. 2, No 5. Р. 240–241.Bouwens L. Cytokeratins and differentiation in the pan- creas // J. Pathol. 1998. Vol. 184, No 3. Р. 234–239.Bouwens L. Cytokeratins and differentiation in the pan- creas // J. Pathol. 1998. Vol. 184, No 3. Р. 234–239.Cole L., Anderson M., Antin P.B. et al. One process for pancreatic beta-cell coalescence into islets involves an epithelial-mesenchymal transition // J. Endocrinol. 2009. Vol. 203, No 1. Р. 19–31.Cole L., Anderson M., Antin P.B. et al. One process for pancreatic beta-cell coalescence into islets involves an epithelial-mesenchymal transition // J. Endocrinol. 2009. Vol. 203, No 1. Р. 19–31.Cotton C.U., al-Nakkash L. Isolation and culture of bo- vine pancreatic duct epithelial cells // Am. J. Physiol. 1997. Vol. 272, No 6 (Pt. 1) Р. 1328–1337.Cotton C.U., al-Nakkash L. Isolation and culture of bo- vine pancreatic duct epithelial cells // Am. J. Physiol. 1997. Vol. 272, No 6 (Pt. 1) Р. 1328–1337.Gittes G.K. Developmental biology of pancreas: compre- hensive review // Dev. Biol. 2009. Vol. 326, No 1. Р. 4–35.Gittes G.K. Developmental biology of pancreas: compre- hensive review // Dev. Biol. 2009. Vol. 326, No 1. Р. 4–35.Hick A.-Ch., van Eyll J.M., Cordi S. et al. Mechanizm of primitive duct formation in the pancreas and submandi- bular glands: a role for SDF-1 // BMC Dev. Biol. 2009. Vol. 14, No 9. Р. 66.Hick A.-Ch., van Eyll J.M., Cordi S. et al. Mechanizm of primitive duct formation in the pancreas and submandi- bular glands: a role for SDF-1 // BMC Dev. Biol. 2009. Vol. 14, No 9. Р. 66.Hyder A., Laue Ch. and Schrezenmeir J. Variable responses of islet cells of different ages and species to hypo-Hyder A., Laue Ch. and Schrezenmeir J. Variable responses of islet cells of different ages and species to hypo-xia // Transplant.Proc. 1998. Vol. 30, No 2. Р. 578–580.xia // Transplant.Proc. 1998. Vol. 30, No 2. Р. 578–580.Li J., Wang Y., Yu X. et al. Islet neogenesis-assosiated protein-related pentadecapeptide enchances the differen- tiation of islet-like clusters from human pancreatic duct cells // Peptides. 2009. Vol. 30, No 12. Р. 2242–2249.Li J., Wang Y., Yu X. et al. Islet neogenesis-assosiated protein-related pentadecapeptide enchances the differen- tiation of islet-like clusters from human pancreatic duct cells // Peptides. 2009. Vol. 30, No 12. Р. 2242–2249.Shapiro A.M.J., Ricordi C., Hering B.J. et al. Internati- onal trial of the Edmonton protocol for islet transplantation // N. Eng. J. Med. 2006. Vol. 355, No 13. Р. 1318–1330.Shapiro A.M.J., Ricordi C., Hering B.J. et al. Internati- onal trial of the Edmonton protocol for islet transplantation // N. Eng. J. Med. 2006. Vol. 355, No 13. Р. 1318–1330.Zhang M., Schleicher R.L., Fink A.S. et al. Growth and function of isolated canine pancreatic ductal cells // Pan- creas. 2000. Vol. 20, No 1. Р. 67–76.Zhang M., Schleicher R.L., Fink A.S. et al. Growth and function of isolated canine pancreatic ductal cells // Pan- creas. 2000. Vol. 20, No 1. Р. 67–76.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.